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    Tiangen DP117无内毒素质粒大提试剂盒用户指南:高纯度质粒制备技术方案

    更新时间:2025-05-02      点击次数:248

    Tiangen DP117无内毒素质粒大提试剂盒用户指南:高纯度质粒制备技术方案

    一、产品核心特性与工作原理

    1. 技术优势与试剂盒组成

    • 核心特性

      • 高效去内毒素:采用硅胶膜吸附技术结合去内毒素系统,内毒素去除率>99%,残留量<0.1 EU/μg DNA,符合细胞转染及动物实验标准;

      • 超螺旋结构保留:通过温和裂解体系(P2缓冲液)与多步离心过滤(CS1过滤器),超螺旋质粒占比>85%,显著提升转染效率;

      • 高通量处理:单次可处理100-200 mL菌液,高拷贝质粒得率达500-1500 μg,低拷贝质粒得率200-600 μg,满足大规模实验需求。

    • 试剂盒组成

      • 裂解系统:溶液P1(含RNase A)、溶液P2(裂解液)、溶液P4(中和液);

      • 纯化系统:平衡液BL、漂洗液PW(含无水乙醇)、无水乙醇、洗脱液TB;

      • 耗材:吸附柱CP6(50 mL离心管适配)、收集管、过滤器CS1。

    2. 适用范围与兼容性

    • 下游应用

      • 常规实验:酶切、PCR、测序、连接、转化;

      • 实验:基因治疗载体构建、显微注射、RNA干扰、CRISPR-Cas9基因编辑;

      • 细胞实验:适用于内毒素敏感型细胞(如Huh7、HEK293T)的转染,转染效率较普通质粒提升30%-50%。

    • 质粒兼容性

      • 拷贝数:高拷贝质粒(如pUC19)推荐菌液量100 mL,低拷贝质粒(如pBR322)推荐菌液量200 mL;

      • 大小范围:支持1-20 kb质粒提取,对于>10 kb大质粒,需增加菌液量及裂解液体积。

    二、典型应用场景与实验方案

    1. 基因治疗载体构建

    • 实验设计

      1. 使用DP117提取慢病毒载体骨架质粒(如pLVX-IRES-ZsGreen1),菌液量200 mL;

      2. 定量检测浓度(OD260)及纯度(OD260/OD280=1.8-2.0),琼脂糖凝胶电泳验证超螺旋结构;

      3. 结合Lipofectamine 3000转染293T细胞,48小时后荧光显微镜观察转染效率>80%。

    • 结果示例

      • 提取的质粒浓度达1.2 μg/μL,内毒素含量0.05 EU/μg,显著低于普通试剂盒(>1 EU/μg);

      • 慢病毒滴度达1×10? TU/mL,较含内毒素质粒提升40%。

    2. CRISPR-Cas9基因编辑

    • 实验设计

      1. 提取sgRNA表达质粒(如pX458),菌液量100 mL;

      2. 通过DP117去除内毒素,避免非特异性免疫激活;

      3. 核转染HeLa细胞,72小时后T7E1酶切验证编辑效率>35%。

    • 结果示例

      • 提取的质粒OD260/OD280=1.85,内毒素未检出;

      • 基因编辑效率较含内毒素质粒提升25%,脱靶率降低15%。

    3. 动物体内实验

    • 实验设计

      1. 提取治疗性基因表达质粒(如pAAV-CMV-GFP),菌液量200 mL;

      2. 通过DP117确保内毒素<0.1 EU/μg,避免小鼠注射后发热反应;

      3. 尾静脉注射C57BL/6小鼠(50 μg/只),7天后肝脏组织GFP荧光强度较含内毒素质粒组提升60%。

    • 结果示例

      • 质粒纯度(OD260/OD280=1.92)及内毒素水平符合FDA要求;

      • 动物存活率100%,无炎症反应。

    三、操作规范与注意事项

    1. 实验前准备

    • 试剂配制

      1. 溶液P1:加入RNase A后混匀,4℃保存;

      2. 漂洗液PW:按标签要求加入无水乙醇;

      3. 洗脱液TB:65-70℃预热以提高洗脱效率。

    • 仪器校准

      • 离心机:确保转速误差<2%(8000 rpm对应8228×g);

      • 移液器:定期校准,避免体积误差。

    2. 操作流程

    • 菌体收集

      1. 100-200 mL菌液8000 rpm离心3分钟,弃上清;

      2. 菌体沉淀用吸水纸吸干残留培养基。

    • 裂解与中和

      1. 加入8 mL溶液P1,涡旋振荡至菌体悬??;

      2. 加入8 mL溶液P2,温和翻转6-8次,室温放置5分钟;

      3. 加入8 mL溶液P4,立即翻转6-8次,室温放置10分钟。

    • 过滤与纯化

      1. 裂解液8000 rpm离心5分钟,上清倒入过滤器CS1,缓慢推动推柄过滤;

      2. 滤液加入0.3倍体积异丙醇,分两次过吸附柱CP6;

      3. 依次加入10 mL漂洗液PW、3 mL无水乙醇洗涤,8000 rpm离心2分钟弃废液;

      4. 空柱8000 rpm离心5分钟,去除乙醇残留。

    • 洗脱与保存

      1. 吸附柱置于新收集管,加入1-2 mL预热洗脱液TB,室温放置5分钟;

      2. 8000 rpm离心2分钟,收集质粒溶液,-20℃保存。

    3. 实验后处理

    • 废弃物处理

      • 含内毒素的菌体沉淀及滤液按生物危害品处理;

      • 染菌的耗材121℃高压灭菌30分钟。

    • 仪器维护

      • 吸附柱CP6为一次性耗材,禁止重复使用;

      • 离心机转子用70%乙醇擦拭,避免腐蚀。

    四、常见问题解答

    Q1:提取的质粒浓度低如何解决?
    A:

    1. 检查菌液OD600值,推荐高拷贝质粒1.8-2.0,低拷贝质粒2.0-2.5;

    2. 确保菌体悬浮,避免裂解不充分;

    3. 延长洗脱时间至10分钟,或重复洗脱一次。

    Q2:内毒素残留超标怎么办?
    A:

    1. 确认溶液P4与CS1过滤器未过期;

    2. 裂解液离心时间延长至15分钟,确保内毒素充分沉淀;

    3. 使用LAL法验证内毒素水平,必要时增加乙醇洗涤次数。

    Q3:如何提高大质粒(>10 kb)的得率?
    A:

    1. 菌液量增加至300 mL,裂解液P1/P2/P4按比例增加至12 mL;

    2. 洗脱液TB预热至70℃,洗脱体积增加至3 mL;

    3. 吸附后静置10分钟再离心,增强结合效率。




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